Algas en el acuario plantado: diagnóstico, causas y control biológico

El término «alga» no designa un grupo taxonómico, sino un conjunto heterogéneo de organismos fotosintéticos. En un acuario plantado de agua dulce conviven representantes de varias divisiones, y a ellos se suman las cianobacterias, que son procariotas y, por tanto, no son algas. Distinguirlos correctamente es el primer paso: cada grupo responde a condiciones distintas y un tratamiento indiscriminado suele fracasar.

1. Tipos de algas: identificación y diagnóstico

En la práctica acuarófila se manejan cuatro grandes bloques: algas verdes (Chlorophyta), algas rojas (Rhodophyta), diatomeas (Bacillariophyceae, dentro de Ochrophyta) y cianobacterias. El diagnóstico se apoya en cuatro caracteres observables a simple vista o con lupa de mano: el color, la textura (polvorienta, filamentosa, mucilaginosa, dura), la arquitectura del talo (unicelular, filamentoso, ramificado, en penacho) y su distribución espacial, es decir, dónde se asienta preferentemente. Un quinto criterio, muy útil, es la facilidad con que se desprende al frotar.

Conviene añadir dos precisiones. Primera: el «agua verde» no es una superficie colonizada, sino una suspensión de algas verdes unicelulares que enturbia la columna de agua. Segunda: las cianobacterias forman láminas que pueden parecer algas, pero su naturaleza procariota explica que respondan a tratamientos distintos y que presenten un olor terroso característico.

Nombre común	Grupo	Aspecto y textura	Localización típica
Alga verde polvo	Chlorophyta (unicelular)	Capa fina, verde claro, se raspa con facilidad	Cristales y superficies lisas
Alga verde punto	Chlorophyta (orden Coleochaetales)	Puntos verde intenso, duros, muy adheridos	Hojas viejas de crecimiento lento y cristales
Filamentosas verdes	Chlorophyta (Cladophora, Spirogyra, Oedogonium)	Filamentos, madejas o mechones ásperos al tacto	Bordes de hojas, decoración, rejillas
Rhizoclonium	Chlorophyta	Filamentos pardusco-verdosos, algodonosos, poco brillantes	Zonas de bajo flujo, tallos bajos y sustrato
Diatomeas	Bacillariophyceae	Polvo marrón que se frota con el dedo	Cristales, sustrato y hojas nuevas
Alga de pincel negro	Rhodophyta (Audouinella spp.)	Penachos negros o morados, duros, resistentes al raspado	Bordes de hojas, rocas, salidas del filtro
Staghorn	Rhodophyta (Compsopogon)	Ramificaciones gris-verdosas en forma de asta	Plantas de crecimiento lento, cerca del flujo
Cianobacterias	Cyanobacteria (no son algas)	Láminas verde-azuladas, mucilaginosas, con olor terroso	Sustrato y zonas de baja oxigenación

Esta tabla permite un primer encuadre, pero no sustituye la observación repetida: la misma especie puede cambiar de aspecto según la luz y el estado nutricional. Identificar el grupo antes de actuar evita intervenciones inútiles, como aumentar el abonado para combatir diatomeas o raspar cianobacterias sin corregir la causa.

2. Desequilibrios que las provocan

La idea de que «los nutrientes producen algas» es una simplificación. En un acuario plantado, las algas compiten con las plantas por luz, carbono inorgánico y nutrientes minerales; lo que las favorece no es tanto la concentración absoluta de un compuesto como la existencia de un recurso abundante que las plantas no están aprovechando. Dicho de otro modo: el problema es el desajuste entre el aporte de recursos y la capacidad de consumo del conjunto vegetal. Con biomasa vegetal suficiente y condiciones estables, niveles relativamente altos de nitrato y fosfato no desencadenan brotes por sí solos.

La luz es el factor maestro. Un exceso de intensidad o de fotoperiodo respecto a la biomasa vegetal y a la disponibilidad de CO₂ deja un margen que las algas aprovechan. La relación no es lineal: pequeños aumentos de intensidad en acuarios poco plantados tienen más efecto que grandes aumentos en acuarios maduros y densamente plantados. El espectro es un factor secundario frente a la intensidad y la duración.

El CO₂ es, probablemente, el desencadenante más frecuente de los brotes persistentes. No solo importa el nivel alcanzado, sino su estabilidad a lo largo del día: las fluctuaciones entre apagado y encendido, o una distribución deficiente que deja zonas con menos carbono disponible, se asocian en la práctica con la aparición de algas rojas como el pincel negro y el staghorn. Conviene señalar que buena parte de estas asociaciones proviene de la observación acumulada por aficionados y no de ensayos controlados, por lo que deben tomarse como indicios y no como leyes.

Entre los nutrientes, los patrones más consistentes son la relación entre nitrógeno y fósforo y el papel del silicio. Las cianobacterias aparecen con frecuencia en acuarios con nitrato muy bajo, fosfato disponible y escasa oxigenación, y algunas fijan nitrógeno atmosférico, lo que refuerza su ventaja en esas condiciones. Las diatomeas son típicas de acuarios nuevos o recién reiniciados, donde el sustrato y el agua aportan silicatos y la comunidad vegetal aún no cubre el espacio disponible; suelen remitir con la maduración. El hierro y los micronutrientes en exceso, con luz alta, se relacionan empíricamente con algas verdes de punto, aunque la evidencia es menos sólida.

El flujo y la materia orgánica cierran el cuadro. Una circulación insuficiente crea zonas muertas donde se acumulan detritus, se reduce el oxígeno disuelto y prosperan cianobacterias y Rhizoclonium. La poda intensa, los cambios bruscos de parámetros, el exceso de alimento o una filtración colmatada alteran el equilibrio en pocos días. La temperatura elevada acelera el metabolismo de todo el sistema, algas incluidas.

Desequilibrio	Mecanismo	Algas indicadoras	Ajuste razonable
Luz excesiva para la biomasa presente	Recurso no aprovechado por las plantas	Filamentosas verdes, verde polvo	Reducir intensidad o fotoperiodo
CO2 bajo o inestable	Carbono limitante y fluctuante	Pincel negro, staghorn	Estabilizar aporte y distribución
Nitrato muy bajo con fosfato disponible	Ventaja para fijadoras de nitrógeno	Cianobacterias	Revisar abonado nitrogenado y oxigenación
Acuario nuevo o reiniciado	Silicatos y comunidad inmadura	Diatomeas	Esperar maduración y mantener limpieza
Flujo insuficiente y detritus	Zonas muertas, baja oxigenación	Cianobacterias, Rhizoclonium	Mejorar circulación y retirar materia orgánica
Poda drástica o cambio brusco	Caída súbita del consumo de recursos	Filamentosas, verde polvo	Podas parciales y cambios graduales

El control biológico —peces loricáridos, gambas, caracoles y microcrustáceos— es un complemento útil, no una solución de fondo: consume biomasa de alga, pero no corrige el desequilibrio que la sostiene. La secuencia lógica es identificar el grupo, corregir el factor limitante y solo después incorporar consumidores, aceptando que la erradicación total no es un objetivo realista en un sistema abierto.

Algas en el acuario plantado: diagnóstico, causas y control biológico

3. Control biológico

El control biológico consiste en utilizar organismos que consumen algas, compiten con ellas por recursos o modifican el biofilm y la microbiota del acuario. No debe entenderse como una solución aislada: en un acuario plantado, la aparición de algas suele indicar un desequilibrio entre luz, nutrientes, CO₂, filtración, carga orgánica y masa vegetal. Introducir herbívoros sin corregir esas causas solo desplaza el problema o lo cronifica. Además, el término “control biológico” no equivale a “pez limpiafondos”: muchos organismos solo consumen algas jóvenes, blandas o de un tipo concreto, y su eficacia depende del tamaño del acuario, de la disponibilidad de alimento y de la edad del ejemplar.

La herbivoría actúa sobre todo en algas verdes incipientes, diatomeas y biofilm. Las algas filamentosas maduras, las algas costrosas y las cianobacterias suelen ser menos palatables. Por ello, el control biológico se combina con retirada manual, poda de hojas afectadas, ajuste de la iluminación y revisión de la relación nitrato/fosfato y del aporte de CO₂. También conviene recordar que los herbívoros añaden carga orgánica: más peces o caracoles no siempre mejoran la calidad del agua.

Organismos frecuentes en control biológico y sus limitaciones

Organismo	Algas o biofilm que suele consumir	Limitaciones y precauciones
Caracoles (Planorbella, Physa, Neritina)	Biofilm, diatomeas y algas verdes incipientes sobre cristales y plantas	No eliminan filamentosas maduras; algunas especies pueden dañar plantas tiernas o multiplicarse en exceso si hay alimento abundante
Camarones (Neocaridina, Caridina)	Biofilm, algas verdes blandas y restos orgánicos	Sensibles a tratamientos químicos y a parámetros inestables; no controlan cianobacterias ni filamentosas gruesas
Otocinclus	Diatomeas y algas verdes sobre hojas y cristales	Requiere acuario maduro y alimento disponible; puede quedarse sin recursos si se elimina toda el alga de golpe
Crossocheilus siamensis (SAE)	Filamentosas y, en algunos casos, algas negras incipientes	Crece mucho, puede volverse menos herbívoro con la edad y no es adecuado para acuarios pequeños
Poecilia (molly)	Puede picotear cianobacterias y algas blandas	No es un control fiable; genera carga orgánica y requiere parámetros adecuados

Las cianobacterias merecen un comentario aparte: no son algas verdaderas, sino bacterias fotosintéticas. Algunos peces o invertebrados pueden consumirlas de forma oportunista, pero no deben considerarse un método de control seguro, ya que pueden acumular toxinas y el problema reaparece si persisten las causas. En estos casos es prioritario mejorar la circulación, reducir materia orgánica, revisar la iluminación y evitar tratamientos antibióticos sin diagnóstico y sin prescripción.

En la práctica, el control biológico funciona mejor como parte de una estrategia integrada: introducir pocos individuos, en cuarentena, después de estabilizar el acuario; mantener una población vegetal sana y en crecimiento; retirar manualmente el alga antes de que se extienda; y no depender de un único organismo. Si el herbívoro no come el alga problema, no se debe aumentar la dosis de animales, sino revisar el diagnóstico.

4. Tratamientos químicos

Los tratamientos químicos deben considerarse el último recurso en un acuario plantado. Ningún producto corrige por sí solo un exceso de luz, una carencia de CO₂, una acumulación de materia orgánica o una fertilización desequilibrada. Antes de aplicar cualquier producto conviene retirar la mayor cantidad posible de alga, podar hojas afectadas, revisar la filtración y comprobar que el problema está bien identificado. Un tratamiento aplicado sobre un diagnóstico erróneo puede dañar plantas, invertebrados, peces y la microbiota del filtro.

Además, la legislación sobre productos fitosanitarios, biocidas y medicamentos veterinarios varía según el país. No deben usarse antibióticos, herbicidas o productos de uso agrícola de forma improvisada, ni mezclar principios activos sin conocer sus interacciones. Las dosis caseras o “de foro” no son una referencia fiable: la toxicidad depende de la especie, del pH, de la dureza, de la temperatura y de la carga orgánica.

Grupos de tratamientos químicos citados en acuariofilia y riesgos principales

Grupo	Ejemplos habituales	Objetivo declarado	Riesgos principales
Oxidantes	Peróxido de hidrógeno	Algas incipientes y materia orgánica; aplicaciones localizadas	Daño a branquias, invertebrados y microbiota; consumo de oxígeno; requiere mucha precaución
Aldeídos	Glutaraldehído, vendido a veces como “CO₂ líquido”	Algas y biofilm	Es un biocida, no una fuente de CO₂; toxicidad para fauna y plantas sensibles; no corrige carencias de carbono
Metales	Compuestos de cobre	Algunas algas y parásitos	Muy tóxicos para invertebrados y sensibles en plantados; pueden acumularse en el sustrato
Antibióticos	Eritromicina y otros	Cianobacterias	Resistencias, alteración de la microbiota, riesgos legales y sanitarios; solo con prescripción veterinaria
Mezclas comerciales	Productos “antialgas” de composición variable	Algas diversas	Efectos no selectivos, daño a invertebrados y plantas, residuos y falta de trazabilidad

Los oxidantes se han usado para aplicaciones puntuales, pero su margen de seguridad es estrecho y pueden afectar a camarones, caracoles y peces sensibles. El glutaraldehído es un biocida: aunque se comercialice con nombres que sugieren CO₂, no sustituye la inyección de CO₂ y puede perjudicar a plantas delicadas. El cobre no es recomendable en acuarios plantados con invertebrados. Los antibióticos solo tienen sentido con un diagnóstico veterinario y no deben emplearse para “limpiar” el acuario.

Si se decide usar un producto, conviene hacerlo con la marca y la composición identificadas, respetando la legalidad, retirando carbón activo si el fabricante lo indica, aumentando la aireación y vigilando la aparición de mortalidad o estrés. Tras el tratamiento, hay que retirar el alga muerta para evitar un pico de amoníaco y materia orgánica. El éxito real se mide por la ausencia de rebrote en las semanas siguientes, no por el blanqueamiento inmediato del alga. En la mayoría de los acuarios plantados, la combinación de diagnóstico, manejo de luz y nutrientes, control biológico moderado y retirada manual es más segura y duradera que cualquier producto.

5. Prevención (I): la estabilidad como principio de gestión

En el acuario plantado, prevenir no significa «matar algas», sino conseguir que el medio deje de favorecerlas. Las algas no son un patógeno exógeno que entra con el agua: sus propágulos —esporas, células móviles, fragmentos— están presentes de forma ubicua en cualquier instalación. Lo que convierte esa presencia discreta en un brote visible es la disponibilidad de un recurso que la vegetación superior no está aprovechando. Por eso la prevención no se apoya en productos, sino en la constancia de cuatro factores: luz, CO₂, nutrientes y carga orgánica.

El marco conceptual útil es la ley del mínimo de Liebig: el crecimiento está limitado por el recurso más escaso, no por el más abundante. En un acuario con inyección de CO₂ y abonado, la consecuencia práctica es que cualquier fluctuación brusca —un pico de amonio tras una poda agresiva o una muerte de peces, un descenso de CO₂ por falta de presión en la botella, una subida de temperatura que reduce el oxígeno disuelto— desplaza el equilibrio a favor de las algas, que en muchos casos son más eficientes que las plantas vasculares en capturar recursos puntuales. El amonio, en particular, es una fuente de nitrógeno que las algas filamentosas y las cianobacterias aprovechan con rapidez; su aparición intermitente es uno de los desencadenantes más frecuentes de brotes en acuarios por lo demás correctos.

El CO₂ merece un apartado propio porque es, con diferencia, el parámetro que más desestabiliza. No importa tanto el valor absoluto como la regularidad: encender la inyección una o dos horas antes del fotoperiodo y cortarla antes de que se apague la luz, mantener un drop checker en verde y evitar superficies de intercambio gaseoso variables (flautas, skimmers, nivel de agua bajo) son medidas más eficaces que cualquier ajuste de dosis. Un CO₂ oscilante produce crecimiento irregular y deja ventanas de tiempo en las que la demanda de carbono de las plantas no está cubierta.

La luz debe ajustarse a la capacidad real del sistema. Fotoperiodos de seis a ocho horas con rampa de encendido y apagado reducen el estrés y evitan picos instantáneos. Ante un brote, bajar la intensidad es la medida más rápida, segura y reversible: reduce la demanda de CO₂ y nutrientes sin tocar la química del agua. Conviene recordar que la intensidad alta no es un fin en sí mismo; solo tiene sentido si la masa vegetal, el CO₂ y el abonado pueden sostenerla.

Sobre los nutrientes, la idea de que «abonar alimenta las algas» es una simplificación engañosa. Lo que favorece a las algas no es la presencia estable de nitrato o fosfato, sino su alternancia entre exceso y carencia, que selecciona organismos capaces de responder rápido. Las escuelas de abonado a la demanda y las de limitación controlada difieren en la estrategia, pero coinciden en lo esencial: concentraciones estables y proporciones sin saltos.

Tabla 1. Parámetros de referencia orientativos y errores frecuentes en la prevención

Factor	Referencia orientativa	Error habitual	Efecto sobre las algas
CO₂	Drop checker verde; encendido previo a la luz	Fluctuaciones por difusión insuficiente o botella agotándose	Crecimiento irregular y ventanas de carencia
Fotoperiodo	6–8 h con rampa	Aumentar horas para «compensar» un brote	Más energía disponible para competidores
Nitrato / fosfato	Estables, según la escuela de abonado	Altibajos y carencias puntuales	Selección de especies oportunistas
Materia orgánica	Baja: sifonado y retirada de restos	Hojas muertas y comida sin consumir	Liberación de amonio y consumo de oxígeno
Corriente y filtración	Circulación sin zonas muertas	Prefiltro saturado durante semanas	Acumulación de detritos y biofilm

Por último, la materia orgánica es el factor que más se subestima. Hojas en descomposición, restos de poda, alimento no consumido y biofilm espeso en el sustrato consumen oxígeno, liberan compuestos nitrogenados y crean microambientes donde las algas se instalan. Un sifonado regular y una filtración mecánica limpia forman parte de la prevención tanto como el abonado.

6. Prevención (II): rutina, cuarentena y control biológico preventivo

La prevención se sostiene sobre una rutina semanal corta pero sistemática: cambio de agua del 30–50 %, sifonado de zonas accesibles, retirada de hojas muertas, poda de tallos que sombrean en exceso y limpieza de cristales y prefiltro. El prefiltro debe lavarse con agua del propio acuario, nunca con agua de grifo, para no comprometer la microbiota nitrificante. Esta rutina no elimina las algas, pero mantiene la carga orgánica por debajo del umbral en el que los brotes se vuelven inevitables.

El control de entrada es otra pieza clave. Las plantas nuevas pueden introducir propágulos y, sobre todo, invertebrados no deseados. Una cuarentena de dos a cuatro semanas en un recipiente aparte, con observación y retirada manual de restos, evita trasladar problemas al acuario principal. Los baños desinfectantes —lejía muy diluida, permanganato potásico o alumbre— se emplean con precaución y siempre sobre esquejes resistentes, ya que pueden dañar tejidos sensibles; no sustituyen a la cuarentena.

La densidad vegetal es una herramienta preventiva de primer orden. Un acuario escasamente plantado deja luz y nutrientes disponibles para cualquier colonizador. Plantar denso desde el inicio y mantener plantas de crecimiento rápido —Hygrophila, Limnophila, flotantes— como cultivo de cobertura reduce la luz que llega a las superficies colonizables y compite eficazmente por los nutrientes. La poda debe retirarse del sistema, no dejarse flotando.

Tabla 2. Fauna de control biológico: alcance real y limitaciones

Organismo	Qué consume	Limitaciones
Caridina multianomata (gamba Amano)	Filamentosas incipientes, restos, biofilm	No controla algas adultas; sensible al cobre; mejor en grupo
Planorbella y otros caracoles	Restos vegetales, biofilm, detritos	No come algas establecidas; puede sobrepoblar si hay exceso de comida
Neritina spp.	Algas de cristales y rocas	No actúa sobre plantas; necesita superficies duras
Otocinclus spp.	Diatomeas y biofilm	Delicado, requiere acuario maduro y alimento complementario
Crossocheilus oblongus (SAE)	Filamentosas y BBA en ejemplares jóvenes	Crece mucho; pierde interés con la edad; no es pez para cualquier volumen

La fauna de control es un complemento, no un tratamiento. Introducir animales para resolver un brote activo suele agravar el problema, porque añade carga orgánica y porque muchos de ellos no consumen las algas ya establecidas. Su papel preventivo consiste en mantener a raya los primeros estadios y los restos, siempre dentro de un plan de alimentación ajustado.

La sobrealimentación es la fuente oculta más común de inestabilidad: cada gramo no consumido se transforma en materia orgánica y, eventualmente, en nitrógeno disponible. Alimentar en cantidades pequeñas, retirar sobrantes y no alimentar «por si acaso» es una medida preventiva tan eficaz como cualquier ajuste de abonado.

Finalmente, el registro convierte la prevención en un método. Anotar fecha de cambios de agua, podas, dosis de abonado y cualquier incidencia, junto con una fotografía semanal del acuario, permite detectar tendencias antes de que el brote sea visible. La prevención en el acuario plantado no es una lista de productos, sino la gestión disciplinada de la constancia: luz y CO₂ regulares, nutrientes estables, carga orgánica baja y una comunidad vegetal densa y sana.

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7. ❌ ERRORES FRECUENTES Y MITOS

Uno de los errores más repetidos es creer que las algas aparecen por «exceso de luz» y que basta con apagar la pantalla o hacer un blackout para resolverlo. El apagón reduce la biomasa de algas, pero no corrige el desequilibrio que las provocó: falta de CO₂, nutrientes descompensados, corriente insuficiente o materia orgánica acumulada. Al recuperar la iluminación habitual, el problema reaparece porque las plantas han quedado debilitadas. También es un mito que «los nutrientes alimentan las algas» y que hay que abonar menos o nada. En un acuario plantado con luz media o alta, retirar el abono deja a las plantas sin recursos, frenan su crecimiento y liberan espacio y luz que las algas colonizan sin competencia. El objetivo no es eliminar nutrientes, sino mantener proporciones estables y suficientes para las plantas.

Otro error frecuente es recurrir a los alguicidas de forma rutinaria, como si fueran un mantenimiento preventivo. El glutaraldehído y los productos comerciales «anti-algas» matan la biomasa visible, pero no actúan sobre las causas: el desequilibrio sigue ahí y la reaparición está garantizada, a menudo con especies más resistentes como las cianobacterias. Además, su uso continuado daña plantas sensibles, afecta a caracoles y camarones, y en el caso de los productos con cobre resulta tóxico para invertebrados y acumulable en el sustrato. Un mito muy extendido es que «el agua verde se arregla con un clarificador químico»: el floculante solo agrupa partículas para que el filtro las retenga, sin resolver la causa real, que suele ser amoniaco, luz excesiva o un filtro maduro insuficiente. La dosis puntual puede servir como apoyo, nunca como estrategia.

También se comete el error de limpiar a fondo el acuario cuando aparecen algas: vaciados casi complet

8. ✅ CONCLUSIÓN

El veredicto profesional es claro: en un acuario plantado las algas no se combaten con recetas milagrosas, sino con diagnóstico y gestión ecosistémica. Su presencia debe leerse como un bioindicador de desequilibrios —luz, CO₂, nutrientes, corriente, carga orgánica o biomasa vegetal— y no como una plaga a erradicar a toda costa. Antes de actuar, identifica la especie, observa su crecimiento y revisa parámetros, fotoperiodo, mantenimiento y población. La solución pasa por corregir la causa, estabilizar el sistema y favorecer la competencia vegetal mediante plantas sanas, podas racionales y circulación adecuada. El control biológico con caracoles, gambas, peces algívoros y microfauna es una ayuda complementaria, nunca un sustituto de la gestión. Evita tratamientos químicos indiscriminados y cambios bruscos: retrasan la maduración y enmascaran el problema. La paciencia y la constancia valen más que cualquier producto.

Por tanto, el éxito frente a las algas en un acuario plantado se mide por la estabilidad y la salud del conjunto, no por la ausencia absoluta de microorganismos. Un sistema maduro tolera poblaciones mínimas de algas sin comprometer el paisaje; cuando proliferan, suele haber una causa corregible. Prioriza iluminación ajustada, CO₂ estable, nutrientes equilibrados, filtración eficaz y cambios de agua regulares. Mantén una carga animal prudente, retira hojas muertas y restos de comida, y no introduzcas fauna de control sin cuarentena ni sin conocer sus necesidades. El control biológico funciona mejor como prevención y equilibrio que como emergencia. Si el problema persiste, revisa la relación entre luz, CO₂ y nutrientes antes de añadir más productos. En definitiva: diagnostica, corrige, estabiliza y observa; las algas son una señal, no una sentencia. La mejor estrategia profesional es la gestión paciente del ecosistema.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Por qué salen algas si los test marcan nitrato y fosfato a cero?

Porque un test colorimétrico mide la concentración disuelta en el momento del muestreo, no el nutriente retenido en la biomasa, el detritus o el sustrato, ni la tasa de aporte diario. En un acuario plantado con carga de peces, el fósforo y el nitrógeno entran de forma continua y son inmovilizados rápidamente por plantas y perifiton, de modo que la lectura puede ser indetectable mientras el flujo de nutrientes sigue siendo suficiente para sostener un crecimiento algal. Además, en muchos sistemas el factor limitante real del crecimiento vegetal no es el nutriente mayoritario, sino la luz y el CO₂ (Stevenson, Bothwell & Lowe, 1996; Walstad, 2003). La pregunta útil no es «¿cuánto hay?» sino «¿qué factor está desequilibrado?».

¿Las «algas verdeazuladas» son realmente algas?

No. Son cianobacterias: procariotas fotoautótrofas, no eucariotas, y por tanto fuera del grupo de las algas en sentido estricto (Graham, Wilcox & Cook, 2016). Su presencia en el acuario suele asociarse a baja circulación, acumulación de materia orgánica, capas anóxicas en el sustrato y desequilibrios de nutrientes; muchas cepas son capaces de fijar nitrógeno atmosférico mediante heterocistos. Varias especies producen cianotoxinas (microcistinas, cilindrospermopsina), por lo que conviene manipularlas con guantes, evitar aerosoles e impedir el acceso de niños y mascotas al agua afectada (Chorus & Bartram, 1999; Whitton, 2012). Su retirada manual debe ir seguida de corrección de las causas, no al contrario.

¿Los caracoles, camarones y peces «limpiadores» acaban con las algas?

No eliminan el problema: consumen biomasa y pueden retrasar la colonización, pero no corrigen el desequilibrio que la provoca. La herbivoría es un componente relevante del control del perifiton en ecosistemas acuáticos (Stevenson, Bothwell & Lowe, 1996), y en acuario funciona igual: es un factor de presión, no un tratamiento. A ello se suma que cada animal introducido aumenta la carga orgánica y el consumo de oxígeno, y que muchos invertebrados solo consumen determinados tipos de alga o solo cuando son juveniles. El control biológico debe plantearse como complemento de la gestión de luz, CO₂, circulación y materia orgánica.

¿Sirve un apagón total de varios días para eliminar las algas?

Reduce la biomasa de organismos fotosintéticos, y es especialmente eficaz frente a cianobacterias y algas filamentosas superficiales, pero también afecta a las plantas: sin luz, la respiración continúa, el oxígeno disuelto cae y puede aparecer hipoxia, con riesgo para peces e invertebrados. Es una medida puntual de choque, no un tratamiento de fondo, y no evita la reaparición si la causa persiste (Walstad, 2003). Conviene señalar con honestidad que su eficacia se apoya sobre todo en la práctica de la acuariofilia y no en ensayos controlados específicos; cualquier protocolo debe garantizar aireación y vigilancia de los animales.

¿El CO₂ o el glutaraldehído «matan» las algas?

El CO₂ no es un alguicida: favorece el crecimiento de las plantas vasculares, que compiten por luz y nutrientes, y una concentración estable y suficiente reduce la ventaja competitiva de las algas (Walstad, 2003; Kasselmann, 2003). El glutaraldehído es un biocida de uso industrial y sanitario que en acuariofilia se emplea como fuente de carbono alternativa y con fines alguicidas; su acción no es selectiva, su perfil de seguridad para invertebrados y plantas es discutido y no sustituye la corrección de las causas. No debe presentarse como solución estándar ni como sustituto de una gestión adecuada de la luz y la filtración.

¿En qué orden conviene intervenir cuando aparece un brote?

Primero, diagnóstico del tipo de alga u organismo (diatomeas, filamentosas verdes, algas rojas como Compsopogon o Audouinella, cianobacterias), porque cada una responde a factores distintos: las diatomeas son típicas de acuarios recientes y de agua con sílice disponible (Round, Crawford & Mann, 1990), mientras que las cianobacterias apuntan a materia orgánica y baja circulación. Después, revisar en este orden: fotoperiodo e intensidad lumínica, estabilidad del CO₂, régimen y frecuencia de abonado, circulación y limpieza de filtros y sustrato. La poda y la retirada manual de biomasa, junto con herbívoros adecuados, actúan como medidas de contención, y los tratamientos químicos deben quedar como último recurso, localizados y con precaución.

📚 REFERENCIAS

• Chorus, I. & Bartram, J. (eds.) (1999). Toxic Cyanobacteria in Water: A Guide to Their Public Health Consequences, Monitoring and Management. Londres: E & FN Spon / Organización Mundial de la Salud.
• Graham, L. E., Wilcox, L. W. & Cook, M. E. (